白细胞抗原糖基化位点突变质粒载体构建及表达
周晓曼
上海鹍远健康科技有限公司研发部,上海 215213
[摘要]目的 构建白细胞抗原C(HLA-C)基因糖基化位点突变质粒,初步探讨HLA-C 分子糖基化修饰对HLA-C功能的影响。 方法 利用聚合酶链式反应(PCR)方法扩增出HLA-C 基因以及HLA-C 糖基化位点突变基因,回收后的基因经双酶切后连接到PCMV-Flag 真核表达载体上,构建成功的质粒转染进人胚肾细胞(293T)表达HLAC 蛋白以及糖基化突变HLA-C 蛋白,并用蛋白免疫印迹方法进行鉴定。将鉴定正确的HLA-C 和HLA-C 糖基化位点突变的基因连接到带有红色荧光的载体上,并转染进293T 细胞,进行免疫荧光实验,观察蛋白在细胞中表达情况。 结果 琼脂糖凝胶电泳显示,成功扩增出HLA-C 基因和HLA-C 突变基因;蛋白免疫印迹结果显示成功表达HLA-C 蛋白和HLA-C 糖基化突变的蛋白;激光共聚焦结果显示,正常的HLA-C 蛋白主要表达在胞质和膜周, 而糖基化突变后,HLA-C 大部分表达在胞质中。 结论 成功构建HLA-C 质粒以及糖基化位点突变的质粒载体。本实验结果为进一步研究HLA-C 类分子糖基化修饰提供了基础和思路。
[关键词]主要组织相容性复合体;白细胞抗原;糖基化位点;突变;蛋白表达
主要组织相容性复合体(MHC)是一种表达于脊椎动物细胞表面分子,介导机体内免疫细胞与其他细胞之间的相互作用,在机体识别“自己”和清除“异己”过程中发挥着至关重要的作用[1]。MHC 分子,主要分为两大类,分别是MHC Ⅰ类分子和MHC Ⅱ类分子。MHC Ⅰ类分子表达于所有有核细胞表面, 负责内源性抗原的递呈[2]。MHC II 类分子表达在专职的抗原递呈细胞(APC)表面,负责外源性抗原的递呈[3]。MHC分子在人类又称为白细胞抗原(HLA),Ⅰ类基因主要为经典的HLA-A、HLA-B 和HLA-C 基因,表达在大多数有核细胞的表面[4-5];II 类基因主要为DR、DP 和DQ[6]。新合成的MHC Ⅰ类分子在粗面内质网中,重链的第86 位天冬酰胺处发生糖基化, 再经葡萄糖酶催化形成单糖苷聚糖[7],随后与轻链β2m 形成二硫键,形成稳定的异源二聚体结构,结合抗原多肽,通过滤泡转运到细胞表面,由CD8+细胞毒T 淋巴细胞识别,从而活化T 细胞[8]。
蛋白质是生物学功能行使的直接参与者,机体内的生命活动广泛涉及到蛋白质的修饰, 包括糖基化、甲基化、乙酰化、泛素化和磷酸化等[9]。蛋白质的修饰对其功能的发挥具有重要的决定作用[10]。本研究将HLA-C 的第86 位的天冬酰胺突变成丙氨酸,使其无法发生糖基化。经蛋白免疫印迹(Western Blot)验证,突变后,由于其无法发生糖基化,其蛋白分子量在30 KD左右,比正常的HLA-C 分子分子量小2~3 kD,符合预期[11]。同时进行免疫荧光,观察其在细胞中分布,为HLA-C 糖基化修饰功能研究奠定一定的基础。
1 材料与试剂
1.1 细胞、菌株和载体
人胚肾细胞(293T)购自ATCC,带Flag 标签和荧光标签的PCMV 载体质粒购自addgene,DH5α 感受态细胞购自康为世纪生物科技有限公司。
1.2 主要试剂
BamH Ⅰ、Hind Ⅲ、Xba Ⅰ、Xho Ⅰ、EcoR Ⅰ等限制性内切酶和预染蛋白质分子质量标准以及Lipo2000 购自赛默飞世尔科技公司; 质粒小提试剂盒、DNA 片段回收试剂盒均购自康为世纪公司;SDSPAGE 预制胶购自金斯瑞公司;Trizol 总RNA 提取试剂购自Takara 公司;BCA 蛋白定量试剂盒购自碧云天生物技术有限公司, 抗Flag 小标签抗体以及HRP标记的抗鼠二抗均购自CST 公司。
2 方法
2.1 引物设计及合成
参照NCBI GenBank 中公布的HLA-C 的编码序列,设计其上下游引物。根据文献报道[1],设计突变引物HLA-C-M,将第253~255 位编码天冬氨酸的碱基GAC 突变为编码丙氨酸的GCC。引物由苏州金唯智生物科技有限公司合成。
HLA-C-F:5′-GGAATTCATGCGGGTCATGGCGCCC-3′;HLA-C-R:5′-CGGGATCCCGGGCTTTACAAGT GATGAGAGACTCATCAGA-3′。
HLA-C-M-F:5′-GGAGTATTGGGCCCGGGAGACACAGAAGTA-3′;HLA-C-M-R:5′-TACTTCTGTGTC TCCCGGGCCCAATACTCC-3′。
2.2 核酸提取及目的基因扩增
收集健康人外周血单核细胞,提取细胞中总的RNA进行逆转录,获得cDNA。以cDNA 为模板,HLAC-F/R 为引物,PCR 扩增HLA-C 基因。PCR 扩增条件:95℃预变性5 min;95℃变性30 s,65℃退火30 s,72℃延伸90 s,共35 循环;72℃延伸10 min。聚合酶链式反应(PCR)产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测后回收,获得HLA-C 基因。HLA-C 突变体基因扩增,具体步骤如下。第一步以HLA-C-F 和HLA-C-M-R 为引物,HLA-C 基因为模板进行扩增,PCR 产物进行回收; 第二步以HLA-C-M-F 和HLA-C-R 为引物,HLA-C 基因为模板进行扩增,PCR 产物进行回收;第三步以HLA-C-F/R 为引物, 第一步和第二步回收产物共同作为模板进行扩增,PCR 产物进行回收, 获得HLA-C-M 基因。
2.3 真核表达载体构建
将HLA-C 基因和HLA-C 突变基因, 酶切后回收, 分别与带有Flag 标签的PCMV 载体连接, 转化DH5α 感受态细胞, 在LB 固体培养基上37℃过夜培养,挑取单菌落,液体LB 培养基中震荡培养8 h,对菌液进行质粒小提,质粒双酶切后进行琼脂糖凝胶电泳鉴定,鉴定正确的菌液取部分送苏州金维智生物科技有限公司进行测序。
2.4 质粒转染及表达
293T 细胞扩大培养到一定数量后, 消化接种于12 孔细胞培养板,按照Lipo2000 进行转染。将转染后的细胞放入37℃、含5%二氧化碳的细胞培养箱中培养14~18 h。
2.5 Western Blot 检测
收集分别转染了HLA-C-Flag 和HLA-C-MFlag 的细胞,进行蛋白提取,使用BCA 试剂盒对蛋白进行定量,经SDS-PAGE 后,转印到PVDF 膜上,5%的脱脂奶粉封闭1 h 后, 抗Flag 小标签抗体作为一抗,4℃过夜孵育,以HRP 标记的山羊抗鼠作为二抗,室温孵育2 h,应用增强型ECL 化学发光,检测HLAC-Flag 蛋白和HLA-C-M-Flag 蛋白的表达。
2.6 HLA-C-cherry 和HLA-C-M-cherry 质粒构建及表达
HLA-C-Flag 质粒和HLA-C-M-Flag 质粒进行酶切回收,将回收的HLA-C 和HLA-C-M 片段,与cherry 红色荧光的载体连接,转化DH5α 感受态细胞,在LB 固体培养基上37℃过夜培养,挑取单菌落,液体LB 培养基中震荡培养8 h,质粒小提试剂盒提取质粒。
2.7 免疫荧光-激光共聚焦检测
293T 细胞接种在铺有细胞爬片的24 孔细胞培养板中,分别转染HLA-C-cherry 和HLA-C-M-cherry质粒, 培养18 h 后取出细胞培养板,PBS 洗涤后,加入4%多聚甲醛4℃固定1 h 后,PBS 洗涤, 加入1%Triton 通透10 min,PBS 洗涤后进行封闭, 加入DAPI进行染核,封片后激光共聚焦显微镜观察。
3 结果
3.1 HLA-C-Flag 和HLA-C-M-Flag 真核表达载体构建
将HLA-C 和HLA-C-M 基因插入到PCMV 载体,双酶切进行鉴定,基因大小没有差异(图1)。
图1 HLA-C 和HLA-C-M 真核表达载体双酶切电泳
M:Marker;1:HLA-C 载体酶切;2:HLA-C-M 载体酶切
3.2 HLA-C-Flag 和HLA-C-M-Flag 蛋白表达
将HLA-C-Flag 和HLA-C-M-Flag 质粒分别转染进293T 细胞,进行Western Blot 检测。结果显示,HLA-C 糖基化位点突变后,蛋白分子量比正常HLAC 蛋白要小(图2)。
图2 Western Blot 检测HLA-C 和HLA-C-M 蛋白表达
M:Marker;1:HLA-C 蛋白;2:HLA-C 糖基化位点突变蛋白
3.3 HLA-C-cherry 和HLA-C-M-cherry 荧光质粒表达
HLA-C 主要功能是抗原递呈,可以将细胞内的抗原肽转运到细胞膜表面。因此本研究分别构建了带荧光标签的HLA-C-cherry 和HLA-C-M-cherry 质粒, 通过免疫荧光观察正常HLA-C 蛋白和糖基化位点突变的HLA-C 蛋白在细胞中的表达情况。结果显示, 未突变的和糖基化位点突变的HLA-C 蛋白在胞质中均有表达。但HLA-C 糖基化位点突变后,在膜周围聚集的现象减少(图3,封三)。
4 讨论
主要组织相容性复合体主要参与T 细胞介导的细胞免疫,T 细胞通过T 细胞受体识别MHC 分子递呈的抗原肽,活化T 细胞来杀伤靶细胞,因此MCH 在肿瘤免疫和病毒免疫中发挥着重要的功能[12]。有文献报道,肿瘤细胞可以下调细胞表面的MHC Ⅰ类分子的表达,从而躲避机体抗肿瘤免疫[13]。另外,牛I 型单纯疱疹病毒蛋白UL41, 可以降解MHC Ⅰ类分子的mRNA,从而降低细胞表面MHC Ⅰ类分子表达,来逃逸机体抗病毒免疫[14]。糖基化对蛋白质的稳定性具有一定的作用。有文献报道,β 干扰素和白介素-15 经过糖基化修饰后,与未经糖基化修饰的相比,其对热变形的抵抗力明显增强[15]。同样糖基化修饰的牛胰蛋白酶稳定性也比无糖基化修饰强,原因是糖链会一定程度的遮盖掉蛋白表面的酶位点,从而增强蛋白质对酶的抵抗力[16]。
新合成的MHC 分子重链分子发生糖基化后,与钙联蛋白结合, 随后钙联蛋白招募内质网伴侣蛋白ERp57 促进重链二硫键的形成, 此时轻链β2m 也参与,与重链形成异源二聚体,组成完整的MHC 分子结构[17]。细胞内的抗原被各种蛋白酶水解后,产生的抗原多肽被TAP 转运至内质网, 装配到MHC 分子上,形成MHC-抗原肽复合体,该复合体与内质网中其它协助蛋白结合,将结合的抗原肽转运到细胞表面[18]。
本研究通过PCR 方法成功扩增了HLA-C 基因,同时将HLA-C 的第86 位的天冬酰胺突变成丙氨酸,使其无法发生糖基化修饰。扩增所得片段大小符合预期,并构建了带有Flag 小标签的真核表达质粒,转染进细胞后进行Western Blot 检测,结果显示,天冬酰胺突变成丙氨酸后, 蛋白大小变为30 kD 左右,比正常的HLA-C 蛋白小约3 kD,这是由于本研究将第86位的天冬酰胺突变成丙氨酸, 造成突变体无法发生糖基化修饰,导致蛋白分子量变小。另外本研究还成功构建了带有红色荧光cheery 标签的质粒,转染进细胞后,通过激光共聚焦显微镜观察,发现突变体更多的表达在细胞质中。正常情况下,MHC 重链上的单糖苷聚糖链会与钙联蛋白结合, 招募协助蛋白和MHC-β2m 形成了一个稳定的多结合位点复合体,可以促进MHC Ⅰ类分子的正确折叠。将天冬酰胺突变成丙氨酸后, 重链分子无法进行糖基化修饰形成单糖苷聚糖链,可能会影响钙联蛋白与重链上糖链的结合。本研究为MHC Ⅰ类分子糖基化修饰研究奠定良好的基础。
图3 激光共聚焦显微镜观察HLA-C 和HLA-C-M 在细胞中的表达(1000×)(见内文第32页)
A:激光共聚焦观察HLA-C-Cherry 在细胞中的表达;B:DAPI 染核,HLA-C-Cherry 在细胞中的表达;C:HLA-C-M-Cherry 在细胞中的表达;D:DAPI 染核,HLA-C-M-Cherry 在细胞中的表达
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Construction and expression of human leukocyte antigen glycosylation site mutant plasmid vector
ZHOU Xiao-man
Department of Research and Development, Shanghai Kunyuan Health Technology Co., LTD., Shanghai 215213, China [Abstract]Objective To construct glycosylation site mutant plasmids of human leukocyte-C (HLA-C) gene were, and to preliminarily investigate the effects of glycosylation modification of HLA-C molecule on the function of HLA-C.Methods The HLA-C gene and HLA-C glycosylation site mutation gene were amplified by using the method of polymerase chain reaction (PCR), recovered, and connected to the PCMV-Flag eukaryotic expression vector after double enzyme digestion. The constructed plasmids were transfected into human embryonic kidney cells (293T) to express HLA-C protein and glycosylated mutant HLA-C protein, and were identified by the protein western blot method. The identified correct HLA-C gene and HLA-C glycosylation site mutation gene were connected to the carrier with red fluorescence,and transfected into 293T cells for immunofluorescence experiment to observe the expression of the protein in the cells.Results Agarose gel electrophoresis showed that HLA-C gene and HLA-C mutation gene were successfully amplified.Western Blot results showed successful expression of HLA-C protein and HLA-C glycosylated mutant proteins. Laser confocal results showed that normal HLA-C proteins were mainly expressed in the cytoplasm and peri-membrane,while most HLA-C proteins were expressed in the cytoplasm after glycosylation mutation. Conclusion The HLA-C plasmid and glycosylation site mutant plasmid vectors have been successfully constructed. The results of this experiment provide the basis and ideas for further research on glycosylation modification of HLA-C molecules.
[Key words]Major histocompatibility complex; Human leukocyte antigen; Glycosylation site; Mutation; Expression of protein
[中图分类号]R786
[文献标识码]A
[文章编号]1674-4721(2021)4(c)-0030-04
[作者简介]周晓曼(1991-),女,江苏睢宁人,本科,研究方向:肿瘤精准医疗领域,与肿瘤标志物、肿瘤治疗药物作用靶点相关的检测试剂
(收稿日期:2020-05-11)
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