牛蒡低聚糖GF13对荷瘤大鼠血糖的调节作用
刘建秀1 陈晓荣2 任金玉1
1.济南市第三人民医院麻醉科,济南 250132;2.济南市第三人民医院科教科,济南 250132
[摘要]目的探讨牛蒡低聚糖GF13对STZ糖尿病荷瘤大鼠和低血糖荷瘤大鼠血糖稳定性的影响。方法 人工建立STZ糖尿病荷瘤大鼠1、2、3组,每组10只,按照500mg/(kg·d)灌服5%、10%、20%的牛蒡低聚糖GF13溶液,第4天分别测空腹血糖、餐后2 h、餐后4 h血糖。另取血糖值在3.7~6.9mmol/L的荷瘤鼠,低血糖荷瘤对照组禁食,低血糖荷瘤大鼠实验组灌服200mg/(kg·d)的5%、10%和20%浓度的牛蒡低聚糖GF13。自第2天起,连续3 d尾部取血,测定低血糖荷瘤大鼠血糖值。结果 牛蒡低聚糖GF13对STZ荷瘤鼠的空腹血糖均有较明显的抑制作用,浓度为10%的牛蒡低聚糖GF13对餐后4 h血糖有较明显的抑制作用,达到了显著水平(P<0.05)。在牛蒡低聚糖GF13对低血糖荷瘤鼠血糖的稳定性调节实验中,低血糖荷瘤实验组的血糖降低幅度较低血糖荷瘤对照组小,其中低血糖荷瘤实验3组降低的幅度最小,达到了显著水平(P<0.01)。低血糖荷瘤实验2组的血糖值更接近荷瘤对照组的正常血糖值,差异有统计学意义(P<0.05)。结论 牛蒡低聚糖GF13对荷瘤大鼠的血糖具有双向调节、维持血糖稳定的作用,但又不影响荷瘤大鼠的正常血糖。
[关键词]牛蒡低聚糖GF13;糖尿病;荷瘤大鼠;血糖调节
血糖指标是术前麻醉的必查项目,患者血糖水平的高低,对麻醉效果以及患者手术过程中的生命体征指标有一定影响[1],因此,手术前保证患者的血糖值相对稳定对手术麻醉的效果有重要意义[2]。本研究以STZ糖尿病荷瘤大鼠和低血糖荷瘤大鼠为实验模型,对灌服牛蒡低聚糖GF13后的血糖值进行检测,判断牛蒡低聚糖GF13对荷瘤大鼠的血糖稳定性是否具有调节作用。本研究的意义在于发现一种对患者术前血糖起到稳定作用的物质。
牛蒡低聚糖GF13是寡糖[3-4]的一种,是天然的、聚合度均一、分子结构明确的功能性低聚多糖,可作为防治肿瘤、结肠癌、便秘等的保健食品配料和天然药物[5-7]。据报道,牛蒡低聚糖GF13可诱导植物的抗病性,具有促进双歧杆菌生长等活性[8-9],但其对血糖稳定性的研究报道较少。调查数据显示,我国18岁以上人群中的糖尿病患病率为11.6%,居世界第1位[10]。
1 材料与方法
1.1 材料
Wistar大鼠75只,性别不限,清洁级,重量180~220 g,购于山东大学实验动物中心。基础饲料:祖莉天竺鼠粮;高热饲料:基础饲料55%,猪油16%,蛋黄粉2%,绵白糖27%,总热量为19.93 kJ/g[11-12]。
1.2 方法
1.2.1 肿瘤细胞培养[13-15]
1.2.1.1 RPMI 1640完全培养液的配制 无血清RPMI 1640培养液中加入10%灭活过滤后的胎牛血清和1%双抗(l00 U/ml链霉素和100 U/m l青霉素),混匀,4℃保存,一周内使用。CT26结肠癌细胞生长于RPMI 1640完全培养基中,置于37℃、5%CO2细胞培养箱中培养。
1.2.1.2 PBS溶液配制 8.0 g NaCl,0.2 g KCl,1.56 g Na2HPO4·12H2O,0.2 g KH2PO4,ddH2O定容至1 L,高压灭菌,4℃保存。
1.2.1.3 红细胞裂解液的配制 称取KCl 0.2 g、KH2PO40.2 g、NaCl 8.0 g、Na2HPO4·12H2O 1.56 g,溶于1000ml三蒸水中,分装,高压灭菌,于4℃下保存备用。
1.2.2 荷瘤鼠模型的建立[16]
配置RMPI1640培养基,此培养基中含有10%的胎牛血清和双抗(青霉素、链霉素),将CT26结肠癌细胞培养于这种培养基中,并置于温度为37℃、含有5%CO2的细胞培养箱中培养。用0.25%的胰酶消化对数生长的CT26结肠癌细胞。消化结束后,将细胞轻轻吹打下来,PBS洗两遍。用PBS稀释成2×107~6× 107/ml,75%乙醇消毒大鼠右腋皮下,每只大鼠接种0.5ml。90只Wistar大鼠接种4 d后有86只可见豆粒大小的肿瘤块,可做为荷瘤鼠模型,其余4只建模失败者剔除。
1.2.3 牛蒡低聚糖GF13对STZ糖尿病荷瘤大鼠血糖稳定的影响
1.2.3.1 STZ糖尿病荷瘤模型建立[17-23]链脲霉素(STZ)导致糖尿病的机制主要是由于胰岛细胞中烟酰胺腺嘌呤(DNA)含量减少,STZ分子中的葡萄糖基可使STZ进入胰岛β细胞,引起β细胞核内形态变化,使其染色体凝集、伸长和浓缩。其糖尿病模型操作相对简单,因此是实验室常用的造模方法,很多文章均采用此方法。取荷瘤鼠55只,饲以高热量饲料,维持饲养10 d后,用0.1mol/L的枸橼酸-枸橼酸钠缓冲液(pH4.5)稀释STZ,按200 mg/kg的剂量在荷瘤鼠腹腔注射,连续3 d后,模型组动物禁食(不禁水)24 h,用采血笔从内眦静脉丛采血[24-25],用血糖仪[26-27]测定空腹血糖,筛选出50只血糖值>11.1 mmol/L[28-29]的STZ糖尿病模型荷瘤鼠,5只腹水及建模失败者剔除,筛选出STZ糖尿病荷瘤鼠40只。在建立STZ糖尿病荷瘤鼠模型的同时,取荷瘤鼠10只作为对照组,饲喂基础饲料,维持饲养10 d后,按200 mg/kg体重腹腔注射等体积缓冲液,连续注射3 d。
1.2.3.2 STZ荷瘤大鼠血糖稳定性实验 将40只STZ糖尿病荷瘤大鼠随机分为4组,每组10只,分别组成STZ荷瘤对照组、STZ荷瘤1组、STZ荷瘤2组、STZ荷瘤3组。将纯度为90%的牛蒡低聚糖GF13用蒸馏水稀释为5%、10%、20%的牛蒡低聚糖GF13溶液;按500 mg/(kg·d)对STZ糖尿病荷瘤1~3组分别灌服5%、10%、20%的牛蒡低聚糖GF13溶液,每天饲喂基础饲料,连续3 d。STZ荷瘤对照组灌服等体积的蒸馏水,连续3 d,每天饲喂基础饲料。荷瘤对照组用基础饲料正常饲喂,连续3 d。在第4天,所有对照组与实验组空腹24 h后,尾部取血,用血糖仪测空腹血糖;取血后饲喂基础饲料,餐后2、4 h分别尾部取血,测餐后血糖值。
1.2.4 低血糖荷瘤鼠模型的制备[30]及低血糖荷瘤鼠血糖稳定性实验
取正常饲喂荷瘤鼠30只,禁食3 h后,眼眶采血,筛选血糖值在3.7~6.9 mmol/L的荷瘤鼠,剔除血糖值不在正常范围内的荷瘤鼠2只,剩余28只再选出25只血糖值接近5.3mmol/L的荷瘤鼠作为低血糖荷瘤鼠模型,随机分为荷瘤对照组、低血糖荷瘤对照组、低血糖荷瘤实验1组、低血糖荷瘤实验2组,低血糖荷瘤实验3组,每组5只。荷瘤对照组正常基础饲料饲喂;低血糖荷瘤对照组禁食,饲喂蒸馏水;低血糖荷瘤实验1~3组按照500 mg/(kg·d)分别灌服5%、10%、20%的牛蒡低聚糖GF13溶液。自第2天起,荷瘤对照组、低血糖荷瘤对照组、低血糖荷瘤1~3实验组在每天上午9点、下午3点2个时间点连续3 d同时尾部取血,测定血糖值[34],当日两次血糖值平均数作为当日血糖值。
1.3 统计学处理
采用SPSS 13.0统计学软件对数据进行处理,计量资料以表示,组间比较采用单因素方差分析,以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 牛蒡低聚糖GF13对STZ糖尿病荷瘤鼠血糖稳定性的影响
在本实验中,按照500 mg/(kg·d)给STZ糖尿病荷瘤鼠1组、2组、3组分别灌服5%、10%、20%浓度的牛蒡低聚糖GF13溶液,第4天分别测空腹血糖、餐后2 h、餐后4 h血糖。STZ荷瘤1组、2组、3组与未致糖尿病的荷瘤对照组比较,牛蒡低聚糖GF13对STZ荷瘤鼠的空腹血糖值有较明显的抑制作用;而未灌服牛蒡低聚糖GF13的STZ荷瘤对照组,其空腹、餐后2 h、餐后4 h血糖值与荷瘤对照组相比,仍处于血糖水平较高的状态且达到了极显著水平(P<0.01)。在给药组中,10%浓度的牛蒡低聚糖GF13溶液对STZ荷瘤鼠的空腹血糖有极显著的抑制作用,与STZ荷瘤对照组相比,具有显著的统计学意义(P<0.05)。牛蒡低聚糖GF13对STZ荷瘤鼠的餐后血糖稳定具有一定影响,特别是浓度为10%的牛蒡低聚糖GF13对餐后4 h血糖有较明显的抑制作用,达到了显著水平(P<0.05)。20%浓度的牛蒡低聚糖GF13导致STZ荷瘤3组中的4只STZ荷瘤鼠出现腹泻症状,其中STZ荷瘤鼠有1只腹泻死亡,故差异无统计学意义(P>0.05)(表1)。
表1 牛蒡低聚糖GF13对STZ荷瘤鼠血糖稳定性的影响
与荷瘤对照组比较,*P<0.05,#P<0.01
2.2 牛蒡低聚糖GF13对低血糖荷瘤鼠血糖的稳定性影响
在本实验中,因饥饿导致的低血糖荷瘤模型、灌服牛蒡低聚糖GF13的三组低血糖荷瘤实验组的血糖值降低幅度较低血糖荷瘤对照组小,其中灌服牛蒡低聚糖浓度为20%的低血糖荷瘤实验3组的血糖值降低幅度最小,达到了显著水平(P<0.01)。与低血糖荷瘤对照组相比,低血糖荷瘤实验2组的血糖值更接近荷瘤对照组的正常血糖值,差异有统计学意义(P<0.05)。低血糖荷瘤实验1组空腹第4天有2只荷瘤鼠死亡,故差异无统计学意义(P>0.05)(表2)。
表2 牛蒡低聚糖GF13对低血糖荷瘤鼠血糖的稳定性影响
与低血糖荷瘤对照组比较,*P<0.05,#P<0.01
3 讨论
在牛蒡低聚糖GF13对STZ糖尿病荷瘤鼠血糖稳定性的影响实验中,牛蒡低聚糖GF13对STZ荷瘤鼠的空腹血糖有较明显的抑制作用,其中10%浓度的牛蒡低聚糖GF13溶液对STZ荷瘤鼠的空腹血糖有极显著的抑制作用,对餐后4 h的血糖有较明显的抑制作用。本研究结果显示,灌服牛蒡低聚糖GF13的低血糖荷瘤实验组中的低血糖值降低幅度较小,低血糖荷瘤实验2组血糖值更接近荷瘤对照组的正常血糖值,差异有统计学意义(P<0.05)。
本研究结果表明,牛蒡低聚糖GF13对STZ荷瘤大鼠血糖的升高、饥饿致低血糖荷瘤大鼠血糖的降低均有抑制作用,即对荷瘤大鼠的血糖具有双向调节、维持血糖相对稳定的作用,但其不影响荷瘤大鼠的正常血糖值,这可能与牛蒡低聚糖GF13的分子结构有关。另外,牛蒡低聚糖GF13具有水溶性膳食纤维的特性,能吸水膨胀,可延长胃中食物的消化吸收时间,可能对血糖的稳定起一定作用,因此,可以考虑做糖尿患者的血糖稳定试验。如果牛蒡低聚糖GF13对糖尿患者的血糖能起到稳定作用,那么对于需要手术进行治疗的患者,术前24 h将牛蒡低聚糖作为辅食添加,以辅助稳定血糖,这对提高糖尿病患者手术过程中血糖指标的稳定起到一定作用,从而有助于手术过程生命体征的稳定。由于牛蒡低聚糖GF13具有水溶性膳食纤维的特性,因此,灌服量过大,可能会导致腹泻。本试验过程中,20%浓度的牛蒡低聚糖GF13可出现导致荷瘤大鼠腹泻的现象。
[参考文献]
[1]刘俊杰,赵俊.现代麻醉学[M]2版.北京:人民卫生出版社,1988:895-903.
[2]张彤彦,许嫒.围手术期的血糖控制[J].临床药物治疗杂志,2010,8(4):9-11.
[3]刘红梅,刘聚胜.功能性低聚糖的研究及在食品中的应用现状[J].广轻工科技,2012,(4):15-16,18.
[4]郝林华,陈靠山,李光友.牛蒡菊糖及其制备方法的研究[J].中国海洋大学学报,2004,34(3):423-428.
[5]郝林华,陈靠山,李光友.牛蒡低聚果糖对双歧杆菌体外生长的促进作用[J].海洋科学进展,2005,23(3):347-352. [6]郭敏,陈靠山.牛蒡低聚果糖对小鼠抗疲劳作用的研究[J].天然产物研究与开发,2007,19(4):642-644.
[7]孟宇,盛荣华,陈靠山.牛蒡根化学成分对大鼠阴茎海绵体平滑肌细胞增殖的影响[J].中医药导报,2011,8(10):34-38.
[8]郝林华,陈磊,陈靠山,等.牛蒡低聚果糖的分离纯化及结构研究[J].高等学校化学学报,2005,26(7):1242-1247.
[9]郝林华,陈靠山,李光友.牛蒡低聚果糖对黄瓜幼苗诱导抗病性的研究[J].高技术通讯,2004,14(9):43-48.
[10]廖涌.中国糖尿病的流行病学现状及展望[J].重庆医科大学学报,2015,40(7):1042-1045.
[11]刘小美,宋菊敏,刘丽琼.复方黄连降糖片对2型糖尿病大鼠血糖影响的量-效及时-效关系研究[J].时珍国医国药,2008,19(3):601-603.
[12]王利军,张汝学,贾正平.高脂饲料加STZ联合诱导的大鼠糖尿病模型HPA轴功能变化与糖代谢的关系[J].中国药理学通报,2010,26(3):325-329.
[13]桂琳玲,金先庆,罗庆.小鼠CT26结肠癌耐药动物模型的建立[J].重庆医科大学学报,2010,35(8):1224-1228.
[14]何卉欣,蒋梦萍,刘慧玲,等.阻断TLR4信号通路对结肠癌细胞CT26裸鼠种植生长和凋亡的影响[J].新医学,2015,46(4):216-218.
[15]阮志燕,谢冰冰.芬戈莫德对CT26结肠癌细胞表达Foxp3的影响[J].广东医学,2014,35(13):1977-1980.
[16]张晓红,江和碧.HL60/CVR耐药细胞荷瘤鼠模型的建立[J].广州医药,2013,4(5):1-3.
[17]朱文峰,刘晓萍,曹莹.高脂饮食+STZ诱导2型糖尿病动物模型的优化和评价[J].中国热带医学,2010,10(5):529-533.
[18]杨巍,罗春元,于春雷.不同剂量STZ诱导小鼠糖尿病模型的发病机制[J].吉林大学报(医学版),2006,32(3):432-438.
[19]农慧,盛庆寿,梁健.STZ诱导糖尿病大鼠模型的研究[J].广西医科大学学报,2010,27(1):69-73.
[20]李桂云,吴正治.STZ建立2型糖尿病模型的剂量探讨[J].深圳中西医结合杂志,2007,17(2):74-748.
[21]金勇,朱勇,吴南翔.实验性链脲佐菌素诱导的大小鼠糖尿病动物模型研究进展[J].中国比较医学杂志,2009,19 (3):80-82.
[22]Rees DA,Alcolado JC.Animalmodels of diabetesmellitus [J].DiabetMed,2005,22(4):359-370.
[23]Szkudelski T.Themechanism of alloxan and streptozococin action in B cells of the rat pancreas[J].Physiol Res,2001,50(6):537-546.
[24]刘社琴.血糖检测方法比较分析[J].中国实用医药,2011,6(2):85-87.
[25]刘常同,黄萍.两种血糖检测方法的比较分析[J].现代医院,2012,12(9):9-13.
[26]李延斌.血糖检测仪的发展、临床应用与选购[J].中国医疗器械信息,2008,14(12):25-31.
[27]王连明,辛晓敏,刘晓民,等.血糖测定的影响因素研究[J].中国实验诊断学,2006,10(2):1345-1349.
[28]王竹,杨月欣,向雪松.实验大鼠血糖正常范围的估算[J].卫生研究,2010,39(2):133-139.
[29]盖春柳,赵静如,陈晓隆.糖尿病血糖波动动物模型建立的初探[J].国际眼科杂志,2014,14(4):610-614.
[30]张金凤,陈惠金,吴圣美.新生大鼠缺氧缺血合并高低血糖模型的建立[J].临床儿科杂志,2002,20(7):426-429.
[31]王亚琨,杨洁,王芳,等.糖尿病患者自我血糖监测的临床研究[J].护士进修杂志,2013,28(3):275-279.
Regulation effect of burdock oligosaccharide GF13 on blood glucose in tumor-bearing rats
LIU Jian-xiu1CHEN Xiao-rong2REN Jin-yu1
1.Department of Anesthesiology,the Third People′s Hospital of Jinan City,Jinan 250132,China;2.Department of Science and Education,the Third People′s Hospital of Jinan City,Jinan 250132,China [Abstract]Objective To explore the in fluence of burdock oligosaccharide GF13 on glucostasis of STZ diabetic tumorbearing rats and hypoglycemic tumor-bearing rats. Methods Three groups of STZ diabetic tumor-bearing ratswith 10 in each group were set up artificially.5%,10%,and 20%solution of burdock oligosaccharide GF13 was provided based on 500 mg/(kg·d).During the 4thday,fasting blood-glucose (FBG),2 hours postprandial glucose,and 4 hours postprandial glucose wasmeasured respectively.Tumor-bearing ratswith normal glucose values from 3.7mmol/L to 6.9mmol/L were selected.In the hypoglycemia tumor-bearing rat control group,no food was provided,while in the experimental group of hypoglycemia tumor-bearing rats,5%,10%,and 20%solution of burdock oligosaccharide GF13 was provided based on 200 mg/(kg·d).From the second day,the blood glucose level from hypoglycemia tumor-bearing rats was measured by blood collecting from tails in 3 consecutive days.Results Burdock oligosaccharide GF13 played an obvious inhibition effect on FBG of STZ tumor-bearing rats.The concentration of 10%burdock oligosaccharide GF13 had a great inhibition effect on 4 hours postprandial glucose in a remarkable level(P<0.05).In glucostasis regulation experiment of burdock oligosaccharide GF13 in hypoglycemia tumor-bearing rats,the scope of decrease in the experiment group of hypoglycemia tumor-bearing rats was smaller than that in the control group of hypoglycemia tumor-bearing rats.Among them,the scope of decrease in experimental group three of hypoglycemia tumor-bearing ratswas the smallestwith a remarkable level(P<0.01).The blood glucose level in the experimental group two of hypoglycemia tumor-bearing ratswas tantamount to the normal blood glucose level in the control group of tumor-bearing ratswith a statistical difference(P<0.05).Conclusion Burdock oligosaccharide GF13 plays the roles of dual-directional regulation and maintenance of glucostasis in the blood glucose of tumor-bearing ratswithout influencing on their normal blood glucose levels.
[Key words]Burdock oligosaccharide GF13;Diabetesmellitus;Tumor-bearing rat;Blood glucose regulation
[中图分类号]R-332[文献标识码]A
[文章编号]1674-4721(2016)08(b)-0008-04
(收稿日期:2016-04-20本文编辑:祁海文)
[作者简介]刘建秀(1978-),女,硕士,专业方向:外科麻醉 |